Los agentes etiológicos más prevalentes asociados al complejo respiratorio felino (CRF) son: Herpesvirus felino (HVF-1), Calicivirus felino (CVF), Chlamydophila felis, Bordetella bronchiseptica y Mycoplasma spp. (Litster et al., 2015). Las co-infecciones y las infecciones bacterianas secundarias son habituales (Fernandez et al., 2017, Nguyen et al., 2019). Los gatos afectados por CRF pueden presentar una variada signología que comprende rinitis, conjuntivitis, queratitis, úlceras corneales, fiebre, estomatitis, gingivitis, hipersalivación, úlceras en piel de la zona nasal (Cohn, 2011) y por lo general, no se arriba a un diagnóstico etiológico de certeza. De los agentes involucrados en el CRF, Mycoplasma spp. es el más controvertido. Su rol como agente primario de CRF es discutido, aunque se cree que contribuye como agente secundario, además de encontrarse en gatos sanos (Lee-Fowler, 2014; Fernández et al., 2017). En animales con CRF, su presencia ha sido asociada con conjuntivitis, gingivoestomatitis y enfermedad de las vías respiratorias altas, principalmente. También se lo ha involucrado como agente responsable de enfermedades del tracto respiratorio inferior y de la cavidad pleural como patógeno primario y ocasionalmente se ha documentado como causa de absceso pulmonar y piotórax. (Lee-Fowler, 2014). El diagnóstico de Mycoplasma spp. puede realizarse mediante aislamiento y crecimiento bacteriano a partir de muestras clínicas o técnicas moleculares como la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), pero debido a la dificultad en el aislamiento, la PCR es una técnica de elección para su identificación (Chalker et al., 2004). Si bien Mycoplasma felis (M. felis) es la especie de micoplasma más frecuentemente asociada a gatos domésticos con CRF, otras especies como Mycoplasma gateae (M. gateae), Mycoplasma feliminutum (M. feliminutum), Mycoplasma arginini (M. arginini), Mycoplasma pulmonis (M. pulmonis), Mycoplasma arthritidis (M. arthritidis) y Mycoplasma gallisepticum (M. gallisepticum) también se han asociado con CRF (Greene y Chalker, 2012, Lee-Fowler, 2014). En Argentina existen escasos antecedentes en la literatura acerca de la detección de micoplasmas en gatos enfermos y sanos. Copes et al., en 1997 aislaron Mycoplasma spp en seis de ocho gatos, identificando solamente M. felis. Por ello, el objetivo del presente trabajo fue detectar Mycoplasma spp. en gatos con y sin sintomatología clínica compatible con CRF utilizando PCR.

Se realizó un estudio transversal en una veterinaria de la ciudad de Río Cuarto (Veterinaria Mi Mascota). En total, fueron muestreados 19 gatos (de diferentes edades, machos y hembras, castrados y no castrados, criados adentro o afuera). De los gatos muestreados, 14 tenían signología clínica compatible con CRF (secreción nasal, conjuntivitis y/o sialorrea) y cinco no presentaban sintomatología compatible con CRF. No se registró si estaban vacunados o no contra el CRF. El n de animales muestreados fue establecido para determinar presencia o ausencia (detección de al menos un positivo) estimando una prevalencia del 15% con un 95% nivel de confianza). De cada gato se colectaron muestras de hisopado nasal, conjuntival y bucal con distintos hisopos estériles de dacrón (Deltalab, España). Las muestras fueron refrigeradas a 4oC hasta su arribo al laboratorio. Una vez en el laboratorio, las muestras fueron procesadas del siguiente modo: Por cada animal, se armó un pool de cada uno de los tres hisopos colectados (nasal, conjuntival y bucal). El ADN del pool fue extraído con kit comercial (PuriPrep-S®, Inbiohighway, Argentina) siguiendo las instrucciones del fabricante. Para la detección de Mycoplasma spp., se realizó una PCR anidada utilizando los cebadores y las condiciones descriptas por los autores (Tang et al., 2000). Brevemente, la primera reacción se realizó en un volumen total de 50 µl (45µl de mezcla y 5 µl de ADN templado) conteniendo 1 X de buffer, 50 mM de cada dNTP, 20 pmol de cada cebador externo, 1,25 de Cl2Mg y 1 U de Taq ADN polimerasa (Inbiohighway®, Argentina). El programa de ciclado fue una desnaturalización inicial de 94oC por 30 seg. seguido de 30 ciclos de: desnaturalización a 94oC por 30 seg, annealing a 55oC por 2 min, y extensión a 72oC por 2 min. Con una extensión final de 72oC por 5 min. La segunda reacción se realizó con 1 µl del producto de la primera en 49 µl de mezcla, con los cebadores de la segunda reacción, y la misma mezcla que la anteriormente descripta. Posteriormente y con el fin de identificar la especie de micoplasma más frecuentemente asociada a gatos con CRF, las muestras que resultaron positivas a la PCR antes mencionada, fueron procesadas por una PCR especie específica para M. felis, utilizando los cebadores y las condiciones descriptas por los autores (Chalker et al., 2004), utilizando como control positivo ADN de la colección del Laboratorio de Patología Animal, Facultad de Agronomía y Veterinaria, Universidad Nacional de Río Cuarto. Brevemente, la PCR se realizó en un volumen final de 50 µl (10 µl de ADN templado y 40 µl de mezcla) incluyendo 5X de buffer, 1,5 mM Cl2Mg, 0,2 mM de cada dNTP, 0,5 U de Taq polimerasa (Inbiohighway®, Argentina) y 25pmol de cada cebador bajo las siguientes condiciones de ciclado: Desnaturalización inicial de 95oC por 5 min, 30 ciclos de desnaturalización a 95oC por 45 seg, annealing a 51oC por 30 seg y extensión a 72oC por 20 seg, seguido por una extensión final a 72oC por 5 min. Los productos de PCR fueron visualizados en gel de agarosa al 1,5% teñidos con SYBR Green I® (Thermofischer, Argentina). No se identificó la especie de ningún otro micoplasma.

Cinco gatos resultaron positivos a la PCR para la detección de Mycoplasma spp. (5/19- 26% - IC 95% 9,1-51,2-) y de ellos, solamente uno (1/19-5% - IC 95% 0,1-26) resultó positivo a la PCR específica de M. felis. De los cinco gatos positivos a la PCR tamiz, cuatro presentaron algún tipo de secreción, y solo uno no presentó ninguna. El gato positivo a M. felis era un animal de un mes de edad, con los tres tipos de secreciones (Tabla 1).

Tabla 1
Resultados de la PCR para la detección de Mycoplasma spp. y Mycoplasma felis de los gatos muestreados de acuerdo a la edad

(M: Meses, A: Años), crianza (Outdoor/Indoor), castrados (SI/NO), sexo (M: macho, H: hembra) y la presentación de descarga nasal (SI/NO), descarga ocular (SI/NO), sialorrea (SI/NO). ND: No disponible

Identificación del paciente	Edad	Crianza	Castrado	Sexo	Descarga Nasal	Descarga Ocular	Sialorrea	PCR
								Mycopalsma spp	M. felis
1	6 M	O	NO	H	SI	SI	NO	-	-
2	ND	O	SI	M	SI	SI	SI	-	-
3	2M	I	NO	H	SI	SI	NO	-	-
4	3A	O	SI	H	SI	SI	SI	+	-
5	5A	O	SI	M	NO	NO	NO	-	-
6	ND	O	NO	M	SI	NO	SI	-	-
7	3A	O	SI	M	SI	NO	SI	-	-
8	7A	I	SI	H	NO	NO	NO	-	-
9	3A	I	SI	H	NO	NO	NO	+	-
10	1M	I	NO	M	SI	SI	SI	+	+
11	2M	O	NO	M	NO	SI	NO	+	-
12	6M	I	NO	M	SI	SI	NO	+	-
13	4M	O	NO	M	NO	NO	SI	-	-
14	2M	O	NO	H	SI	SI	NO	-	-
15	5M	O	NO	M	SI	SI	SI	-	-
16	1A	O	NO	H	SI	SI	NO	-	-
17	2M	O	NO	M	NO	NO	NO	-	-
18	7M	O	NO	H	NO	NO	NO	-	-
19	2A	O	NO	M	NO	SI	SI	-	-

El objetivo planteado en el presente trabajo fue alcanzado, ya que logró detectarse Mycoplasma spp. en cinco gatos, identificando, además, en uno de ellos a M. felis. El hecho de que, de las cinco muestras positivas a la PCR de género, solo una fuera positiva a la PCR específica de especie, puede deberse a dos factores: O bien a la mayor sensibilidad de la PCR anidada respecto a la PCR estándar, o bien a la presencia de otras especies de micoplasmas en los individuos muestreados. Respecto al primer factor, se conoce que la PCR anidada, utilizada en este caso para la detección de Mycoplasma spp. es más sensible, que la PCR estándar (Green y Sambrook, 2019). Otras técnicas más sensibles como la PCR en tiempo real ya están disponibles (Söderlund et al., 2011; Płoneczka-Janeczko et al., 2011) y podrían utilizarse en futuros estudios. Respecto al segundo factor, varias otras especies de micoplasmas, aparte de M. felis como Mycoplasma felifaucium, M. feliminutum, M. gateae, Mycoplasrna leocaptivus, Mycoplasma leopharyngis y Mycoplasma simbae, han sido aislados a partir del tracto respiratorio de felinos, incluyendo al gato doméstico (Felis catus), lince (Felis lynx), puma (Felis concolor), leopardo (Panthera pardus), león (Panthera leo), tigre (Panthera tigrh) y guepardo -Acinonyx jubatus- (Cole et al., 1967; Heyward et al., 1969; Hill, 1975, 1986, 1992). Particularmente en los gatos domésticos, M. gateae, M. feliminutum, M. arginini, M. pulmonis, M. arthritidis, M. gallisepticum, Acholeplasma spp. y Ureaplasma spp han sido asociados a infecciones del tracto respiratorio superior y M. felis y M. gateae a infecciones del tracto respiratorio inferior (Greene y Chalker, 2012, Lee Fowler, 2014). Lamentablemente, solo M. felis fue identificado en el presente estudio. Según el diseño de muestreo utilizado, los resultados sugieren que la prevalencia de Mycoplasma spp. sería superior al 15%, aunque obviamente, por el número de gatos muestreados y por el tipo de estudio, no podría ser extrapolado a la población de gatos de la ciudad de Río Cuarto. En este sentido, prevalencias más altas han sido informadas en otros estudios realizados en otras partes del mundo en gatos con sintomatología clínica compatible con CRF. Así, un estudio reciente realizado en España reveló que la prevalencia de M. felis fue del 46,5% en gatos con enfermedad de las vías respiratorias superiores, 38,3% en gatos con conjuntivitis y del 37,7% de gatos con gingivoestomatitis (Fernández et al., 2017). Lamentablemente, en Argentina no existen demasiados antecedentes de la detección de micoplasmas en gatos con y sin sintomatología respiratoria compatible con CRF. En 1997, Copes et al., aislaron M. felis en seis gatos, constituyendo el principal precedente en la detección de este patógeno, pero no encontraron M. gateae. Por ello, este estudio podría ser un puntapié inicial para futuros estudios epidemiológicos en la región, muestreando un mayor número de individuos. Los resultados obtenidos en el presente informe, junto con referencias en la literatura señalan la importancia de la detección, no solamente de Mycoplasma spp. y M felis, sino de todos los agentes involucrados en el CRF. Ya se conoce que las co-infecciones son comunes en gatos con CRF (Fernández et al., 2017; Nguyen et al., 2019), además, se ha señalado que M. felis es el agente más prevalente en infecciones del tracto respiratorio superior (Nguyen et al., 2019). Esto constituye un llamado de atención tanto a los colegas clínicos y a aquellos de laboratorios de diagnóstico, para trabajar conjuntamente y así poder arribar a diagnóstico de certeza en gatos con CRF, dada la implicancia del mismo en el tratamiento de los pacientes. Por otro lado, la metodología de la toma de muestras realizado en este estudio podría recomendarse para la detección de agentes involucrados en el CRF, dado que se trata de muestras poco invasivas y fáciles de colectar. Por último, la presencia de M. felis y otras especies de micoplasmas se han asociado tradicionalmente a conjuntivitis, gingivoestomatitis y enfermedad de las vías respiratorias altas (Campbell et al., 1973; Grene y Chalker, 2012, Fernandez et al., 2017; Le Boedec, 2017; Nguyen et al., 2019), aunque a M. felis también se lo ha asociado a meningoencefalomielitis (Beauchamp et al., 2011), artritis (Liehmann et al., 2006), asma y bronquitis crónica (Schulz et al., 2014), por lo que también debería diagnosticarse en estos casos. Futuros estudios son necesarios no solo para determinar la prevalencia de micoplasmas en gatos en la región, sino también para identificar las especies más frecuentes y las co-infecciones con otros agentes involucrados en el CRF.

Agradecimientos

A Veterinaria Mi mascota y al área de IDi de ACERCA laboratorio.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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Notas de autor

ptamiozzo@ayv.unrc.edu.ar