INTRODUCCIÓN

La Pampa Deprimida ocupa una superficie aproximada de 90.000 km2 y se encuentra dominada por pastizales naturales que abarcan el 70% de dicha superficie (Soriano, 1991; Rodríguez & Jacobo, 2012). Se caracteriza por su relieve casi plano, con pendientes que no superan el 3% y el predominio de suelos salinos y/o alcalinos con drenaje deficiente, lo que determina la ocurrencia de eventos de inundación y/o anegamiento a lo largo del año (Paruelo & Sala, 1990; Moscatelli, 1991; Rodríguez & Jacobo, 2012; Di Bella et al., 2016) y, en general, con moderados valores de conductividad eléctrica (CE) en la solución edáfica (Miaczynsky, 1995). En la región, que presenta una gran heterogeneidad florística a través del paisaje, se distinguen cuatro comunidades vegetales según la posición topográfica y el tipo de suelo: A (loma), B (media loma), C (bajo dulce) y D (bajo salino) (León et al., 1979; Batista et al., 1988; Burkart et al., 1990; Batista & León, 1992; Rodríguez & Jacobo, 2012). La comunidad A se caracteriza por relieves positivos, suelos profundos (Hapludoles o Argiudoles), ácidos y no salinos (CE de 1 y 2 dS m-1 a 5 y 25 cm de profundidad respectivamente), bien drenados y frecuentemente modificados por el uso agrícola. La comunidad B se halla en áreas planas con suelos hidromórficos, sujetos a inundaciones de corta duración, menos profundos, ácidos, no salinos en superficie (CE de 2 dS m-1 a 5 cm de profundidad), pero alcalinos y salinos en profundidad (CE entre 8 y 9 dS m-1 a 25-35 cm de profundidad) por lo que las sales del horizonte sub-superficial suelen ascender cuando la cobertura vegetal es escasa (e.g., sobrepastoreo, labores mecánicas o aplicaciones de herbicidas). La comunidad C se desarrolla sobre suelos anegables pero no salinos ni alcalinos (Argiacuoles o Argialboles). La comunidad D se halla sobre suelos anegables, salinos y/o alcalinos, con poca materia orgánica (Natracualfes). Las oscilaciones en la profundidad del nivel freático, con agua cargada de sales, son una de las principales causas de salinización de los suelos (Zamolinski, 2000; Casas, 2013; Sfeir, 2015).

La elevada salinidad en los suelos reduce el potencial agua del mismo, lo que dificulta o impide la absorción de agua y nutrientes por las raíces, y puede producir toxicidad por acumulación de iones Na⁺ en los tejidos vegetales (Tal, 1985; Munns & Tester, 2008; Turan et al., 2012; Flowers et al., 2015; Sandhu et al., 2017). El estrés salino afecta la mayoría de los procesos fisiológicos de las plantas como el crecimiento, la fotosíntesis, la síntesis de proteínas y el metabolismo energético (Shabala et al., 2014; Munns & Gilliham, 2015; Pittaro et al., 2015). Sin embargo, la duración y severidad del período de estrés, al igual que la especie afectada y su estado fenológico, determinarán la magnitud de los efectos observables y los procesos fisiológicos afectados por esta condición (McCue & Hanson, 1990). Así, la mayor parte de las plantas son más sensibles a la salinidad durante la germinación y emergencia que durante los estados posteriores de crecimiento y desarrollo (Francois & Maas, 1993; Marcum, 2002; Cardamone et al., 2018). Durante la germinación, al disminuir el potencial osmótico del medio, se reduce la absorción de agua por parte de la semilla y se generan condiciones que favorecen la entrada de iones tóxicos, lo que afecta al embrión y al desarrollo de las plántulas (Yokoi et al., 2002; Bahizire, 2007).

Entre las especies otoño-inverno-primaverales que coexisten en las comunidades A y B se encuentra: festuca alta [Schedonorus arundinaceus (Schreb.) Dumort, sinónimos: Festuca arundinacea Schreb., Lolium arundinaceum (Schreb.) S.J. Darbyshire, Schedonorus phoenix (Scop.) Holub] (Roitman & Preliasco, 2018). No sólo crece espontáneamente en estas comunidades (Colabelli et al., 2006), sino que se está expandiendo aceleradamente y es capaz de desplazar a la mayoría de las especies nativas, debido a su mayor habilidad competitiva. Así, existen estudios que muestran que la exclusión total del ganado no promueve la restauración de comunidades de pastos nativos sensibles al pastoreo, sino que potencia la invasión de festuca (Chaneton, 2016). Además, actualmente se realizan intersiembras de festuca alta en pasturas degradadas (Prinicipi et al., 2011). Es una especie caracterizada por una gran plasticidad fenotípica frente a un amplio rango de condiciones climáticas y edáficas (Mazzanti et al., 1992; Maddaloni & Ferrari, 2005) y cuando es bien manejada alcanza valores de digestibilidad de la materia seca de 70‑75%, con contenidos de proteínas superiores al 15% y de fibra detergente neutro de 50% (Agnusdei & Di Marco, 2014). Por otra parte, presenta moderada tolerancia a la salinidad (Maas, 1986), por lo que su supervivencia es afectada con valores de CE cercanos a 4 dS m^-1 (Shannon, 1997).

Al igual que otras gramíneas C₃, la festuca alta puede establecer una relación simbiótica con hongos endófitos asexuales de transmisión vertical, es decir, a través de semillas infectadas (White et al., 1993; Clay & Schardl, 2002). El hongo endófito que infecta a las plantas de esta especie, Epichloë coenophiala (Morgan-Jones & W. Gams) C.W. Bacon & Schardl (=Neotyphodium coenophialum (Morgan-Jones & W. Gams) Glenn, C.W. Bacon & Hanlin (Leuchtmann et al., 2014) le otorga mayor potencial de crecimiento y tolerancia a estreses bióticos y abióticos (Clay, 1987; Lyons et al., 1990; Malinowski & Belesky, 2000; Omacini et al., 2001; Saikkonen et al., 2013; Bourguignon et al., 2015), sin embargo, son escasos los trabajos que evalúan los efectos de la presencia de hongos endófitos asexuales del género Epichloë sobre la tolerancia a la salinidad en gramíneas templadas (Koch et al., 2017). El hongo produce una serie de compuestos secundarios, dentro de los cuales los más estudiados son los alcaloides. Los principales son los ergoalcaloides, los indol-diterpenos, las peraminas y las lolinas (Saikkonen et al., 2013; Schardl et al., 2013). Mientras los indol-diterpenos y ergoalcaloides (e.g. ergovalina) causan intoxicaciones en mamíferos (i.e. festucosis), las peraminas y las lolinas le otorgan resistencia a insectos (Schardl & Phillips, 1997; Saikkonen et al., 2013).

En los últimos años se ha observado un creciente nivel de casos de intoxicación por alcaloides en los animales que consumen festuca alta infectada en la Cuenca del Salado (Elizalde & Riffel, 2015; García et al., 2017). Una estrategia para disminuir los riesgos de festucosis sería la siembra de cultivares de festuca alta libres de endófito o, alternativamente, infectados con endófitos seguros o amigables (“safe” o “non-toxic endophytes”; Bouton et al., 2002). Estos últimos se caracterizan por producir alcaloides de la familia de las lolinas y peraminas, pero no alcaloides tóxicos para el ganado (Schardl, 2009; Gundel et al., 2013; Johnson et al., 2013). Por ejemplo, los cultivares infectados con el endófito seguro AR542 y AR584 han mostrado un buen desempeño agronómico sin generar problemas de toxicidad (Hopkins et al., 2010; Lugtenberg et al., 2016). Estos materiales se comercializan en Estados Unidos, Nueva Zelanda y Australia (Lugtenberg et al., 2016). En Argentina, es posible disponer de cariópsides del cv. Taita infectado con el endófito seguro AR584 a través de la empresa Gentos S.A. El cv. Taita, es uno de los cultivares comerciales más utilizados en la región debido a que presenta un amplio rango de adaptabilidad y una estructura de planta densa con alto vigor de implantación y excelente producción (Gentos, 2019).

El objetivo de este trabajo fue comparar la tolerancia a la salinidad de distintos materiales de S. arundinaceus libres e infectados con el endófito silvestre y seguro durante la germinación, para: 1) evaluar si la presencia del endófito otorga ventajas competitivas en la germinación y crecimiento inicial de las plántulas en condiciones de salinidad, y 2) identificar materiales inocuos que toleren estos ambientes y eventualmente puedan ser intersembrados para competir o contrarrestar el avance del porcentaje de festuca alta naturalizada infectada.

MATERIALES Y MÉTODOS

Sitio experimental, obtención del material y determinaciones previas

Se trabajó con cariópsides con sus coberturas (lemma y pálea), en adelante “semillas”^[1]. Se evaluaron cuatro materiales genéticos de festuca alta: una población naturalizada libre de endófito (S-), una población naturalizada infectada con el endófito silvestre E. coenophiala (S+), cv. Taita (provisto por Gentos S.A) libre de endófito (T-) y cv. Taita con el endófito seguro AR584 (Grasslanz Technology Limited, Palmerston North, Nueva Zelanda) (T+). Las semillas originales de festuca S+ se cosecharon en diciembre de 2015 en un pastizal del Partido de Mar Chiquita (37º 32' S; 57º 55' O, identificado previamente por Petigrosso et al. (2013) y se almacenaron en heladera a 5°C para mantener la viabilidad del endófito hasta su utilización. Las semillas S‑ se obtuvieron a partir del almacenamiento de semillas S+ a 20 °C de temperatura y 52% HR durante 12 meses (Nosquese, 2017). En marzo de 2018, con el objetivo de contar con semilla producida y cosechada en un mismo año y de comprobada condición endofítica, se sembraron semillas de los cuatro materiales genéticos (i.e. S-, S+, T- y T+) en bandejas plantineras con 50 celdas a razón de una semilla por celda y cinco bandejas por material. El sustrato empleado fue tierra del horizonte superficial de un suelo Argiudol típico. Las bandejas se ubicaron en un invernáculo y cuando las plantas comenzaron a macollar se determinó la presencia de endófito mediante la técnica de diagnóstico de Belanger (1996) para eliminar las plantas que no correspondían al estado endofítico del respectivo material. Posteriormente las plantas se trasplantaron y cultivaron al aire libre en macetas de 1 l hasta completar el estado reproductivo. En ese momento se cosecharon las semillas producidas, se procesaron para eliminar impurezas empleando un soplador, y se verificó la condición endofítica (i.e. 0% o 100%, según correspondiera) mediante el análisis microscópico de las mismas (Saha et al., 1988). El poder germinativo de las semillas obtenidas varió entre 86% y 90% (S‑: 87%, S+: 90%, T‑: 86% y T+: 88%).

Diseño y conducción del experimento

Se utilizó un diseño en bloques completos aleatorizados con tres repeticiones en el tiempo (22/03/2019; 17/05/2019 y 07/10/2019), con arreglo factorial. Los dos factores experimentales fueron: i) material genético de festuca alta, con cuatro niveles: S-, S+, T- y T+, y ii) condición salina, con tres niveles: (control), 40 y 80 mM NaCl (estos dos últimos equivalentes a aproximadamente 4 dS m^-1 y 8 dS m^-1, respectivamente; Munns, 2002). Previo a cada siembra, las semillas se esterilizaron en alcohol 70% durante 15 segundos, luego se enjuagaron con agua, se colocaron en una solución de hipoclorito de sodio al 20% durante 10 min y se enjuagaron con abundante agua. En cada repetición, se sembraron 50 semillas de cada uno los materiales en rollos de papel (Maguire, 1962), embebidos en agua destilada (control) o la solución correspondiente. Una vez formados los rollos, se sometieron a un pre-enfriado a 5°C durante 48 h para romper la dormición de las semillas y luego se trasladaron a una cámara de germinación donde permanecieron durante 14 días a 25°C.

Determinaciones

1. - Energía germinativa (EG): a los 7 días se abrieron los rollos y se contaron las semillas germinadas (ISTA, 2008). Las semillas se consideraron germinadas cuando la radícula tenía una longitud igual o mayor a 2 mm. La EG se determinó como el porcentaje de semillas germinadas con respecto al total de semillas sembradas (50).

2. - Poder germinativo (PG): a los 14 días se abrieron los rollos y se contaron las semillas germinadas. Además, las semillas y plántulas se clasificaron en plántulas normales, plántulas anormales, semillas frescas no germinadas y semillas muertas, de acuerdo a lo establecido en las normas ISTA (2008). El PG se determinó como el porcentaje de plántulas normales desarrolladas con respecto al total de semillas sembradas (50).

3. - Longitud de coleoptilo (LC) y radícula (LR): a los 14 días se midió la LC y LR con una regla milimetrada en una muestra aleatoria de 10 plántulas. Los análisis se efectuaron con el valor promedio del grupo de 10 plántulas.

4. - Peso fresco (PF) y peso seco (PS) de las plántulas: las mismas 10 plántulas en las que se efectuaron las mediciones de longitud, fueron pesadas en conjunto en balanza analítica para obtener el PF. Posteriormente se colocaron en sobres de papel, se secaron en estufa a 60ºC durante 48 h y se volvieron a pesar para determinar el PS.

Análisis estadístico

Los efectos de los factores experimentales y su posible interacción sobre las variables respuesta consideradas se analizaron mediante ANOVA. Todos los análisis se realizaron empleando el software estadístico R (R Development Core Team, 2018). Las medias se compararon con la prueba de la Mínima Diferencia Significativa (MDS); se consideró significativa toda diferencia con un nivel de significancia observado p<0,05.

RESULTADOS

Energía germinativa: No se detectó interacción entre el material de festuca alta y la condición salina (p=0,821). Solamente se registró efecto del tratamiento salino (p=0,006). En promedio, el control presentó mayor EG que la condición de salinidad intermedia (40 mM NaCl) (Figura 1). La EG observada en la condición 80 mM NaCl presentó un valor intermedio y no difirió de las otras dos condiciones.

Figura 1
Energía germinativa (%) de semillas de festuca alta sometidas a distintas condiciones salinas.

El punto negro representa la media estimada; la barra gris representa el intervalo del 95% de confianza para la media y las flechas negras indican la comparación de medias correspondiente. Cuando las flechas negras para dos medias se superponen, la diferencia no es significativa (prueba MDS, $\textcolor{red}{}\alpha$=0,05).

Poder germinativo: No se halló interacción entre el material de festuca alta y la condición salina (p=0,388) pero sí efecto de los factores (condición salina p<0,001; material de festuca p=0,04). En cuanto a la condición de salinidad, el mayor promedio de PG se obtuvo en ausencia de salinidad (Figura 2) y disminuyó a medida que la salinidad aumentó. En cuanto al material, solo se registraron diferencias en las medias de PG entre S+ y el cv. Taita (con o sin endófito seguro). Pero no se detectaron diferencias en los promedios de PG debidas a la condición de infección endofítica ni en la población naturalizada ni en el cv. Taita (Figura 3).

Figura 2
Poder germinativo % de semillas de festuca alta sometidas a distintas condiciones salinas.

El punto negro representa la media estimada; la barra gris representa el intervalo del 95% de confianza para la media y las flechas negras indican la comparación de medias correspondiente. Cuando las flechas negras para dos medias se superponen, la diferencia no es significativa (prueba MDS, $\textcolor{red}{}\alpha$=0,05).

Figura 3
Poder germinativo (%) de semillas de festuca alta provenientes de cuatro materiales diferentes: población naturalizada libre (S-) e infectada (S+) con endófito silvestre; cultivar comercial Taita libre (T-) e infectado (T+) con endófito seguro.

El punto negro representa la media estimada; la barra gris representa el intervalo del 95% de confianza para la media y las flechas negras indican la comparación de medias correspondiente. Cuando las flechas negras para dos medias se superponen, la diferencia no es significativa (prueba MDS, $\textcolor{red}{}\alpha$=0,05).

Longitud de coleoptilo y de radícula: No se halló interacción entre el material de festuca alta y la condición salina (p=0,787) ni efecto del material de festuca alta (p=0,886) para la LC de las plántulas, pero sí efecto de la condición salina (p<0,001). La condición 0 mM (control) presentó un promedio de LC superior al de la condición 80 mM (Figura 4). Por otro lado, no se detectó interacción entre el material de festuca alta y la condición salina (p=0,794) ni efecto de los factores (material de festuca alta p=0,065; condición salina p=0,150) sobre la LR de las plántulas. En promedio, las plántulas de festuca alta presentaron una LR de 4,46±1,47 cm.

Figura 4
Longitud de coleoptilo (cm) de semillas de festuca alta sometidas a distintas condiciones salinas.

El punto negro representa la media estimada; la barra gris representa el intervalo del 95% de confianza para la media y las flechas negras indican la comparación de medias correspondiente. Cuando las flechas negras para dos medias se superponen, la diferencia no es significativa (prueba MDS, $\textcolor{red}{}\alpha$=0,05).

Peso fresco y seco de las plántulas: No se detectó interacción entre el material de festuca alta y la condición salina (p=0,796) ni efecto de ninguno de los factores (material de festuca alta p=0,105; condición salina p=0,165) sobre el PF de las plántulas. En promedio, las plántulas de festuca alta presentaron 0,126±0,032 g PF/10 plántulas. Tampoco, se halló interacción entre el material de festuca alta y la condición salina (p=0,426) ni efecto de la condición salina (p=0,152) para el PS de las plántulas, pero sí efecto del material de festuca alta (p=0,009). Las plántulas de festuca alta pertenecientes a los materiales S+, S- y T- presentaron mayor PS promedio que T+ y no difirieron entre sí (Figura 5). Mientras que el PS de las plántulas de la población naturalizada no fue afectado por la presencia del endófito silvestre, la infección con endófito seguro disminuyó el PS de las plántulas del cultivar Taita.

Figura 5
Peso seco (g/10 plántulas) de semillas de festuca alta provenientes de cuatro materiales genéticos: población naturalizada libre (S-) e infectada (S+) con endófito silvestre; cultivar comercial Taita libre (T-) e infectado (T+) con endófito seguro.

El punto negro representa la media estimada; la barra gris representa el intervalo del 95% de confianza para la media y las flechas negras indican la comparación de medias correspondiente. Cuando las flechas negras para dos medias se superponen, la diferencia no es significativa (prueba MDS, $\textcolor{red}{}\alpha$=0,05).

DISCUSIÓN

Las gramíneas perennes de uso forrajero presentan generalmente un lento crecimiento inicial y escasas reservas en la semilla, lo que determina que el establecimiento de las plántulas sea una de las etapas más críticas en la implantación del cultivo (Ungar, 1978; Ruiz & Terenti, 2012). Si a esto se le suman las condiciones adversas en el medio, como pueden ser el déficit hídrico o la presencia de sales en el perfil del suelo, el establecimiento de la pastura resulta aún más difícil (Jauregui et al., 2017).

Bajo nuestras condiciones experimentales, el PG disminuyó a medida que la salinidad aumentó respecto al control, independientemente del material de festuca alta utilizado. Según Wang et al. (2020), los efectos del hongo endófito Epichloë bromicola sobre la germinación de las semillas de Hordeum brevisubulatum (Trin.) Link en condiciones de estrés salino, estarían determinados por la concentración de NaCl. Así, cuando las semillas se expusieron a soluciones 0 y 100 mM NaCl, no se registraron efectos significativos sobre parámetros relacionados con la germinación (i.e. tasa de germinación y longitud de radícula y de coleoptilo) como resultado de la infección con endófitos, pero a concentraciones de salinidad más altas (200 y 300 mM NaCl), el endófito aumentó significativamente la tasa de germinación y la longitud de la radícula y del coleoptilo. Song et al. (2015) analizando también los efectos del endófito E. bromicola sobre el crecimiento y la germinación de semillas de H. brevisubulatum bajo estrés salino, observaron que la germinación de las semillas de plantas infectadas fue significativamente mayor que las de plantas libres de endófito en soluciones 200 y 300 mM NaCl. Según estos autores, el endófito E. bromicola aumentó la tolerancia al estrés salino en H. brevisubulatum al aumentar la germinación de las semillas y posterior crecimiento de las plántulas. Por otro lado, Koch et al. (2017) observaron que el hongo endófito Epichloë festucae var. lolii aumentó la tolerancia a la salinidad (15 dS m^-1) en cuatro clones de Lolium perenne L. Según estos autores, la respuesta de tolerancia a la salinidad dependería de la interacción entre el genotipo del hospedante y el genotipo del endófito. Además, se ha observado que la variabilidad en la respuesta a las condiciones salinas, incluso dentro de una misma especie, podría incluir componentes genéticos y ambientales, como por ejemplo, vinculadas al sitio donde fueron recolectadas las semillas (Borrajo & Alonso, 2004). Así, en varios ensayos con especies forrajeras se ha demostrado la existencia de variabilidad genética respecto a la tolerancia a la salinidad en poblaciones de sitios con condiciones contrastantes (Bazzigalupi et al., 2008). Las poblaciones provenientes de lugares salinos fueron las más tolerantes a la salinidad mientras que las poblaciones de lugares no salinos presentaron variabilidad para dicho carácter. Es posible que esta condición no se manifieste fenotípicamente en dichas poblaciones debido a una falta de selección natural que favorezca la adaptación y persistencia en condiciones de salinidad (Bazzigalupi et al., 2008). En este sentido, Zubiaur (2016) al comparar la tolerancia a la salinidad en el estado de germinación de plantas de raigrás anual infectadas con Epichloë occultans y plantas libres de tres poblaciones provenientes de ambientes de diferente calidad (según parámetros edáficos, presencia de pendiente y flora circundante), encontró una ventaja adaptativa de las plantas infectadas en ambientes de baja calidad.

En el presente trabajo, los materiales de festuca S+, S- y T- tuvieron mayor promedio de PS que T+. Esto indica, por un lado, que en el caso del cv. Taita, el promedio de PS fue menor en plántulas infectadas que en aquéllas libres de endófito seguro; y por otro, que en la población naturalizada el promedio de PS no difirió entre plántulas infectadas y libres de endófito silvestre, independientemente de la condición de salinidad. En este sentido, se ha sugerido que semillas en las que se ha eliminado el hongo endófito, podrían mantener las ventajas que les habría otorgado una asociación previa con Epichloë (i.e. efecto residual que persistiría luego de la pérdida de viabilidad del endófito). Además, Gundel et al. (2017) postuló la existencia de un “efecto transgeneracional” sobre plantas hospedantes con endófitos de transmisión vertical. Debido a lo anteriormente expuesto, y dado que en el presente experimento las semillas libres de endófito silvestre con las que se trabajó provienen de semillas infectadas de la misma población en las cuales se eliminó el endófito (Nosquese, 2017), a futuro debería evaluarse por cuántas generaciones podría extenderse el efecto residual del mismo.

Los resultados referentes al cv. Taita son contrarios a los hallados por Petigrosso (com. pers.) en condiciones normales de crecimiento. Según este autor, 47 días después de la siembra las plantas del cv. Taita infectadas con endófito seguro AR584 tuvieron mayores valores de biomasa seca total que las libres de endófito, debido a valores más elevados de biomasa de raíz. Por otro lado, estudios realizados en Festuca rubra L. mostraron que el aumento de la concentración salina de los suelos provocó una disminución en parámetros de crecimiento (e.g. producción de biomasa área y subterránea), y que esa disminución fue mayor en plantas infectadas con E. festucae que en las libres de endófito (Vázquez de Aldana et al., 2011). En el caso de la población naturalizada, nuestros resultados coinciden con los hallados por Reza Sabzalian & Mirlohi (2010), quienes encontraron que el PS de las plantas de festuca alta infectadas con E. coenophiala no fue significativamente diferente al de las plantas libres de endófito bajo condiciones de salinidad. Sin embargo, bajo nuestras condiciones experimentales, los resultados obtenidos fueron independientes de la condición de salinidad.

Considerando que las predicciones de cambio climático global indican una tendencia creciente en la frecuencia de exposición de las plantas a condiciones de estrés salino (Taleinisk et al., 2007; Taleinisk, 2014) y que el medio en el que las semillas germinan puede afectar el porcentaje de germinación y la acumulación de iones (Harivandi et al., 1982; Zhang et al., 2011; Serena et al., 2012), futuros experimentos deberían evaluar concentraciones salinas más elevadas a las estudiadas en este trabajo y comparar diferentes medios de crecimiento (e.g. suelo, hidroponia). Los estudios también deberían extenderse a un mayor número de poblaciones o cultivares de festuca alta y llevarse a cabo en estados más avanzados de desarrollo de las plantas. Este último punto permitiría comprobar si el costo de mantenimiento del endófito en las plantas infectadas (ver Cheplick et al., 1989) sería compensado por un aumento del vigor y una mayor tolerancia a la salinidad en etapas posteriores de crecimiento. Además, desde una perspectiva epidemiológica, si la simbiosis no fuera positivamente seleccionada (i.e. si las plantas infectadas no presentaran ventajas adaptativas sobre las libres de endófito frente a algún estrés), la incidencia del endófito en las poblaciones vegetales debería decrecer a lo largo del tiempo y esto no coincide con lo que se ha registrado en la Pampa Deprimida (Elizalde & Riffel, 2015; García et al., 2017). Por esta razón, no podrían descartarse las ventajas de la asociación endófito‑gramínea por un solo aspecto donde la simbiosis resulte neutra o incluso mostrase un aparente efecto deletéreo (Stefanoni Rubio, 2019).

CONCLUSIONES

Bajo las condiciones experimentales del presente trabajo, la asociación de festuca alta con el hongo endófito, tanto silvestre como seguro, no conferiría tolerancia a la salinidad a la población silvestre ni al cv. Taita, respectivamente, dado que no se registraron ventajas en ninguna de las variables relacionadas con la germinación.

Agradecimientos

El presente estudio se desarrolló en el marco del Proyecto 15/A603, AGR599/19 de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional de Mar del Plata.

BIBLIOGRAFÍA

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Notas

Notas de autor

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