RESUMEN GRÁFICO

Figura 1. Montaje experimental con hongos del género Aspergillus sp. y poliestireno expandido (PS) con espesor de 0,3 cm y un área de 48 cm2 en 70 g de suelo estéril (durante una hora a 121 °C, 103,4 KPa) y posterior desmontaje a los 30 y 60 días.
autores.

1. INTRODUCCIÓN

La contaminación producida por la inadecuada disposición final del poliestireno expandido (PS), también conocido como corcho blanco, icopor, poliespán o poliespuma, ha crecido de manera exponencial en los últimos años. A nivel mundial, el consumo de PS ha ido en aumento, pasando de 10 millones de toneladas en 1978 a 60 millones en el año 2000 (Cruz Cuevas y Zaldúa Ramírez, 2020).

El poliestireno procede del petróleo, del cual se obtiene el monómero estireno, este es un material polimérico y espumado compuesto por un 98 % de aire y 2 % de derivados del petróleo, polimerizándose con agua y un agente expansor que produce el PS (Arthuz-López y Pérez-Mora, 2019). La estructura única del PS, con su cadena principal de carbono lineal y átomos alternos unidos a restos de fenilo, hace que su biodegradación sea muy difícil. Por lo tanto, la degradación del PS se ha convertido en un problema global crítico (Kim et al., 2021). Ya que su recuperación y reciclaje no siempre es económicamente factible, debido al precio de mercado inestable del plástico virgen.

El poliestireno se utiliza en muchas aplicaciones como envases desechables y materiales de embalaje y puede provocar problemas medioambientales, debido a su alto consumo (Gil-Jasso et al., 2019) desde su producción hasta su eliminación (Desole et al., 2024). Existen algunas preocupaciones relacionadas con la migración de estireno del poliestireno para el envasado de alimentos. Aunque el monómero de estireno no es persistente y no se bioacumula, la Agencia Internacional para la Investigación sobre el Cáncer (IARC) clasifica el monómero de estireno como probablemente cancerígeno para los humanos (Halim et al., 2024), debido a que sus residuos contienen sustancias precursoras de dioxinas que pueden causar problemas de reproducción, desarrollo y alteraciones en el sistema inmunitario (Milicevic et al., 2015).

Aunque el PS puede persistir en el entorno natural durante mucho tiempo, sufre una serie de procesos de envejecimiento ligero, térmico, oxidativo por sustancias químicas y radiación UV, rotura mecánica y, en última instancia, degradación. El envejecimiento del PS se ve afectado por sus características como estructura y peso molecular, tamaño de las partículas y cristalinidad entre otros, y factores ambientales, entre los que se encuentran los microorganismos, niveles de oxígeno, pH, humedad y radiación UV (Ho et al., 2018; Ge et al., 2023). Se ha demostrado que la luz mejora eficazmente la generación de especies reactivas de oxígeno (ROS, por sus siglas en inglés), promoviendo así el proceso de fotoenvejecimiento. Los grupos carbonilo en el PS le permiten absorber la energía de la luz durante el envejecimiento, lo que lleva a la excitación al triplete, oxidando el PS a dióxido de carbono y carbono orgánico disuelto (Zhu et al., 2020).

La degradación de los plásticos es una reacción intramolecular, que se caracteriza principalmente por una reducción del peso molecular y una pérdida de masa del plástico, esta se puede atribuir a la hidrólisis y oxidación microbiana que normalmente ocurren a través de una secuencia de etapas interrelacionadas que abarcan la colonización, biofragmentación, bioasimilación y biomineralización (Dong et al., 2024).

Las investigaciones sobre la degradación del PS, polietileno (PE) y otros plásticos comenzaron en las últimas décadas y se han probado diferentes métodos (pirólisis, combustión y vertedero) (Raddadi & Fava, 2019). Sin embargo, estos esfuerzos pueden producir microplásticos, contaminación atmosférica y de las aguas (Kim et al., 2020).

Las investigaciones sobre la biodegradación de plásticos se volvieron relativamente populares en los últimos años (Ba et al., 2018). Por ejemplo, bacterias como Bacillus spp., Pseudomonas spp. (Mohan et al., 2016) y Acinetobacter spp. (Wang et al., 2020) fueron identificadas como biodegradadores de PS. También se ha mostrado la eficiencia de insectos, como larvas de Tenebrio molitor y la polilla Galleria mellonella, capaces de biodegradar dicho polímero (Bombelli et al., 2017).

Por otra parte, los hongos también se han estudiado, entre ellos el género Aspergillus sp., este es un hongo filamentoso conocido por su adaptabilidad y amplia distribución en diversos entornos, produce una amplia gama de enzimas extracelulares que participan en la biodegradación de polímeros plásticos en suelos (Flórez et al., 2024). Algunas especies conocidas que muestran una degradación efectiva de los plásticos son Aspergillus flavus y Aspergillus niger, que producen peroxidasa de manganeso y peroxidasa de lignina, enzimas que inducen a la biodegradación del PS (Srikanth et al., 2022).

El objetivo de este trabajo fue evaluar la biodegradabilidad del poliestireno expandido (PS), en suelo, utilizando hongos del género Aspergillus sp. durante dos periodos. El aporte de esta investigación a la ingeniería se basa en la evaluación de procesos biotecnológicos mediados por hongos del suelo, para generar un impacto ambiental al biodegradar un residuo altamente contaminante en los ecosistemas.

2. MATERIALES Y MÉTODOS

Preparación del poliestireno expandido

Las muestras de PS se cortaron con las siguientes dimensiones: 4 cm x 4 cm x 0,3 cm. Estas se lavaron con etanol al 70 % y luego con agua destilada, durante un minuto con cada solvente. Posteriormente, se dejaron en el desecador durante 48 horas y se pesaron. Las muestras fueron sometidas a radiación UV con cinco lámparas (LUMEK) de 15 W cada una y 254 nm de longitud de onda durante una hora por cada lado, a 27 cm de distancia y, finalmente, se pesaron.

Suelo

Se tomó una muestra de suelo (Andisol), a una profundidad de 0 a 20 cm, correspondiente a un horizonte A, en Rionegro, Antioquia, a la cual se le retiraron raíces y rocas, se secó al aire durante cinco días, y luego se pasó por un tamiz número 10, para obtener una muestra homogénea. Este suelo se caracterizó de manera fisicoquímica y se esterilizó en autoclave durante una hora a 121 °C, 103,4 KPa (Flórez et al., 2024). Se sirvieron 70 gramos de suelo en recipientes metálicos esterilizados, junto con los inóculos obtenidos y las muestras de poliestireno expandido.

Inóculos

Los hongos Aspergillus niger y Aspergillus flavus son de la colección de microbiología del suelo de la Universidad Nacional, se sembraron por separado en agar Sabouraud, se incubaron durante cinco días a 28 °C. Se obtuvieron los inóculos de cada hongo por medio de cortes selectivos en medio sólido 1 cm² realizados en la etapa estacionaria.

Montaje

En el diseño experimental se emplearon dos factores: inoculo (control: no inoculado, Aspergillus flavus, Aspergillus niger y el consorcio de ambas cepas) y tiempo de degradación (30 y 60 días).

Desmontaje

Al completar el tiempo, cada muestra de PS se lavó con agua destilada estéril y etanol al 70 %, con el fin de eliminar los restos del suelo adheridos en la superficie y los microorganismos; sin embargo, este método puede que no retire el 100 % de estos debido a su fuerte adherencia al sustrato. Usar otros métodos para lavar el PS podría afectar la masa de la muestra. Posteriormente, se dejaron en el desecador durante 48 horas y se pesaron. Por otra parte, se tomó un gramo de suelo por cada tratamiento para realizar una solución al 10 %. Posteriormente, de esta solución se realizaron diluciones seriadas decimales consecutivas para sembrarlas en medio agar Sabouraud y determinar las unidades formadoras de colonia (UFC/g).

Análisis estadísticos

Para analizar el porcentaje de biodegradación en el PS con hongos del género Aspergillus sp., se realizó un análisis de varianza (ANOVA) y una prueba de diferencia de medias por Duncan (LSD), mediante el programa estadístico STATGRAPHICS Centurion XV, versión 15.2.06.

3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

En la figura 2 se presentan los resultados de la biodegradación del poliestireno expandido pretratado con radiación UV, donde se aprecia que hay diferencia estadística significativa entre los tratamientos no inoculados (menor al 1 %) y los inoculados con los hongos (alrededor del 17 %), esta diferencia es debida al efecto de la radiación UV en la estructura molecular del poliestireno expandido (Ho et al., 2018; Zhu et al., 2020; Ge et al., 2023, Dong et al., 2024).

Figura 2.
Biodegradación (%) de poliestireno expandido en suelo durante 30 y 60 días, de acuerdo con los tratamientos: NI: no inoculado, AN: inoculado con Aspergillus niger, AF: inoculado con Aspergillus flavus, AN+AF: Aspergillus niger y Aspergillus flavus. Cada columna representa el promedio de los datos, las barras de error la desviación estándar. Letras minúsculas diferentes representan diferencia estadística significativa.
autores.

Por otra parte, no se presentaron diferencias entre los porcentajes de degradación de cada hongo de manera individual y en consorcio en los dos periodos evaluados. El desempeño satisfactorio de las cepas de Aspergillus sp. se debe a que estas son capaces de producir enzimas para biodegradar el PS al emplearlo como fuente de carbono y energética (Mostajo-Zavaleta et al., 2017).

En la figura 3 se presentan los resultados del crecimiento de los hongos Aspergillus niger y Aspergillus flavus en el suelo con presencia del PS a los 30 y 60 días. El tratamiento no inoculado no presentó crecimiento de microorganismos, mostrando que no hubo contaminación de los recipientes en los que se hicieron ensayos.

Figura 3.
Crecimiento de las unidades formadoras de colonia (UFC) por gramo de suelo en agar Sabouraud. NI: no inoculado, AN: inoculado con Aspergillus niger, AF: inoculado con Aspergillus flavus, AN+AF: Aspergillus niger y Aspergillus flavus. Cada columna representa el promedio de los datos, las barras de error la desviación estándar. Letras minúsculas diferentes representan diferencia estadística significativa.
autores.

Además, para las muestras inoculadas con las cepas en forma individual, se alcanzaron conteos en órdenes de magnitud de 10⁴ UFC/g sin evidenciar diferencias estadísticas significativas entre ellos. Sin embargo, al analizar el resultado del crecimiento de hongos en los ensayos del consorcio de las dos cepas, a los 60 días se aprecia una diferencia estadística significativa con respecto a los 30 días, en la cual se evidencia un decrecimiento de la población casi a la mitad después de 60 días de tratamiento, uno de los causantes de dicha situación, pudo haber sido la competencia entre las dos especies por espacio, nutrientes y especialmente por la fuente de carbono, en este caso el PS. Aunque este valor disminuyó, la concentración de las cepas no afectó los porcentajes de biodegradación alcanzados por los hongos en 30 días (Figura 2).

Otras investigaciones han obtenido resultados similares en la degradación de materiales poliméricos, con lo cual se evidencia el potencial que tienen los hongos del género Aspergillus sp. (Chien et al., 2022) en su implementación como agentes degradadores de plásticos, como es el caso de Flórez et al. (2024), quienes biodegradaron polietileno de baja densidad (LDPE) con A. niger, A. fumigatus y A. flavus, de forma individual y en consorcio, durante 30 y 60 días, obteniendo mejores resultados en consorcio.

También se pueden citar los aportes de Mostajo-Zavaleta et al. (2017), quienes evaluaron la eficiencia de degradación de bolsas de polietileno de alta y baja densidad en el suelo durante 120 días con cepas de los hongos Aspergillus orizae, A. flavus y A. fumigatus. Con el primer consorcio de A. orizae y A. flavus se tuvo un porcentaje de degradación de 10,91 %, mientras que con el consorcio de A. orizae y A. fumigatus se alcanzó una degradación de 14,78 %. Además, de forma individual, los hongos que mejor degradaron fueron Aspergillus orizae (24,13 %) y Aspergillus fumigatus (23,15 %).

En este tipo de biotratamientos, para que se dé la biodegradación, el primer paso es la colonización del hongo en el suelo y sobre el PS, donde los microorganismos se adhieren a la superficie del material, alterando sus propiedades fisicoquímicas. Durante la segunda etapa, los organismos débilmente adheridos (Epstein & Nicholson, 2016) liberan sustancias poliméricas extracelulares que forman complejos y/o ligandos específicos con el polímero, alcanzando una adhesión permanente que genera un biodaño en la superficie (Gumargalieva et al., 2008; Sánchez, 2020). La siguiente etapa es la biofragmentación del PS por parte de los hongos, mediante la cual se pueden degradar los aditivos y los monómeros plásticos. Este proceso implica la hidrólisis enzimática de polímeros plásticos, lo que resulta en la fragmentación de cadenas de polímeros en unidades más pequeñas, facilitada por la actividad de enzimas extracelulares y la generación de radicales libres por organismos microbianos (Wu et al., 2022). Durante la tercera fase, las unidades químicas más pequeñas resultantes de la descomposición de los plásticos pueden ser absorbidas por las membranas celulares de los microorganismos y posteriormente metabolizadas o transformadas mediante procesos metabólicos. Finalmente, en la cuarta etapa, los plásticos pueden sufrir una mineralización completa (Meyer-Cifuentes et al., 2020).

4. CONCLUSIONES

Dados los resultados de la investigación, se evidencia el potencial que tienen los hongos de género Aspergillus sp. en la biodegradación de materiales poliméricos, como el poliestireno expandido pretratados con radiación UV, ya que en 30 días se alcanzaron niveles de degradación alrededor del 17 %, tanto con cepas individuales como con el consorcio de las mismas. Además, para los ensayos inoculados, no se presentan diferencias estadísticamente significativas con los tiempos de tratamiento utilizados (30 y 60 días).

Por otra parte, se evidencia que los microorganismos sobrevivieron en el suelo con el PS durante los tiempos del tratamiento, debido a que pudieron utilizar el material polimérico como fuente de carbono, ya que, a los 30 días de tratamiento, se obtuvo un conteo de esporas en magnitudes de 10⁴ UFC/g, valores que se mantienen hasta los 60 días de tratamiento para los ensayos con cepas individuales.

Agradecimientos

Los autores agradecen a la Institución Universitaria Colegio Mayor de Antioquia por el soporte económico y al laboratorio de suelos Biofertilizar S.A.S.

LITERATURA CITADA

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Información adicional

FINANCIAMIENTO: No aplica.

CÓMO CITAR: Osorno-Bedoya, L., Lopez Marin, M.J., Uribe Gómez, S., Cardona García, A.M., Granda-Ramirez, F. (2025). Biodegradación del poliestireno expandido pretratado con radiación ultravioleta en suelo con hongos del género Aspergillus sp. Revista de Investigación Agraria y Ambiental, 16(2), 261 - 272. https://doi.org/10.22490/21456453.8577

CONTRIBUCIÓN DE LA AUTORÍA: Autor 1: metodología, investigación, análisis de datos, escritura. Autor 2: investigación, análisis de datos, escritura, revisión. Autor 3: investigación, análisis de datos, escritura. Autor 4: conceptualización, análisis de datos, revisión y edición. Autor 5: adquisición de recursos, administrador del proyecto, supervisión, conceptualización, escritura, revisión y edición.

CONFLICTO DE INTERESES: Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.

Enlace alternativo

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